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怎么给转染细胞的γ-gal原位染色

Release Time:2020-07-22

一、转染细胞的γ-gal原位染色实验简介:
转染细胞的γ-gal原位染色实验,该实验步骤用于检测固定细胞中的β-gal表达。这是确定转染效率的便捷方法。该方法由6个孔引导,并从Sanes的方法进行了修改。对于不同尺寸的培养皿,请根据培养板的膨胀率扩大或减少解量。此步骤可用于悬浮细胞。使用2×106转染的细胞(来自6孔板转染),轻轻离心细胞,并使用与培养板相同的方法冲洗细胞。轻柔地处理细胞,不要摇晃,并低速离心。

二、转染细胞γ-gal原位染色实验所需的材料和试剂:
1.实验用固定液:0.05%戊二醛D-PBS(储存在4°C条件下),2%甲酰胺;
2. 85ml的蒸馏水10ml 10XD-PBS(不含钙和镁)(11mM KHPO4、27mM KCl,81mM Na2HPO4·7H2O,1.4mM NaCl)
3. 0.2ml戊二醛(25%解)、5ml福尔马林(37%甲醛解)
4. 染料:5mM亚铁氰化钾,D-PBS含有5mM铁氰化钾,2mM氯化镁(在4°C下储存)。
5. 底物/染料解:染料解包含有1mg / ml X-gal

三、转染细胞的γ-gal原位染色实验的步骤
1.通过质粒pCMV·SPORT-βgal转染和表达超过24小时以上;
2.用2ml D-PBS(含钙和镁)洗涤细胞一次;
3.使用1ml固定剂在室温下固定细胞大约5分钟。
4.用2ml D-PBS清洗每个孔两次。
5.向每个孔中加入1毫升底物/染料解,并在室温或37°C下与硫酸铵孵育2小时。
6.向每个孔加入2ml的D-PBS缓冲液进行冲洗,在倒置显微镜下进行观察细胞,并估计出蓝色细胞(β-gal阳性)的比例。
7.为了保存培养板,向每个孔中加入1毫升10%福尔马林的PBS,放置10分钟。用D-PBS冲洗并在4°C下储存在PBS中。
四、转染细胞的γ-gal原位染色实验注意事项:
1.准备不含青霉素或链霉素的完全培养基。
2.加入0到22微升50毫克/毫升GENETICIN抗生素解(终浓度0-1100μg/ ml完全培养基,以100ug / ml梯度进行增加)。
3.使用引导酶消化细胞并替换为4000细胞/毫升
4.在6孔板的每个孔中加入100微升细胞悬液,并在每个孔中预先加入2毫升含替代GENETICIN的孔
五、转染细胞的γ-gal原位染色实验所需试剂清单:
序列 产品名 货号 CAS 备注
1 1000ul蓝吸头 FT-1000    
2 Tris-HCl HC2055    
3 PBS HC1488    
4 铁氰化钾 FF0073 13746-66-2  
5 甲酰胺 HXH504144 75-12-7  
以上为转染细胞的γ-gal原位染色,实验请选高质量的试剂。

 
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